La ciencia detrás
de cada frasco.
Cultivo de tejidos no es magia — es química, biología celular y una cadena de decisiones reproducibles. Esta es la versión sin floritura.
Del campo al frasco
sin perder una colonia.
Si entra una sola bacteria al frasco, en 72 horas el medio es una sopa turbia. Cada paso de la cadena existe para que eso no pase.
- 01RecolecciónExplante sano
Tejido meristemático o nodal — el más joven y limpio que la planta donante pueda dar.
- 02EsterilizaciónHipoclorito + surfactante
Hipoclorito con surfactante en concentración ajustada por especie. Tiempo de inmersión variable según rigidez del tejido.
- 03Cabina laminarAire HEPA filtrado
Flujo laminar con aire HEPA filtrado. Instrumental esterilizado por flama entre cada transferencia.
- 04InoculaciónMedio basal MS
Transferencia al frasco con medio nutritivo gelificado. Sello que permite intercambio gaseoso controlado.
- 05Cámara de cultivoFotoperíodo controlado
Temperatura, fotoperíodo, espectro e intensidad calibrados por etapa.
El medio decide
qué hace la planta.
MS basal de Murashige y Skoog, ajustes hormonales por etapa y un pH 5.8 que se siente trivial — hasta que mueve la respuesta del 10 al 85%.
Mismo MS, distinta etapa, distinta planta.
La sal basal Murashige & Skoog 1962 es la columna vertebral. Sobre ella montamos auxinas, citoquininas, vitaminas y azúcares en combinaciones específicas por etapa.
La proporción auxina/citoquinina decide si la célula crece como brote, como raíz, o como callo desorganizado. Lo que ves al lado es la receta base con la que arrancamos casi todos los protocolos.
- Ajustamos por especie usando titulación dose-response
- Documentamos cada lote con número de batch y pH medido
- Esterilización final por autoclave / olla de presión
De explante a planta
en cinco saltos.
Cada etapa tiene sus condiciones, sus indicadores de éxito y sus formas particulares de fallar. La micropropagación seria empieza con saber diagnosticar.
Establecimiento
El explante entra al sistema. Esterilización, evaluación de oxidación y respuesta inicial al medio.
- Medio
- MS + citoquinina baja
- Luz
- Fotoperíodo controlado
- Tiempo
- 10–21 días
Contaminación bacteriana / fúngica · oxidación fenólica
Multiplicación
Activación de meristemos axilares. El tejido pasa de 1 brote a 5–30 en cada subcultivo.
- Medio
- MS + citoquinina elevada
- Subcultivo
- Periódico
- Ratio
- ×3 a ×10 por ciclo
Hiperhidricidad · variación somaclonal · callo no deseado
Enraizamiento
El brote se separa y se transfiere a medio sin citoquininas, con auxina suave. Aparece el sistema radicular funcional.
- Medio
- ½ MS + auxina suave
- Carbón act.
- Dosificado
- Tiempo
- 14–28 días
Raíz vidriosa · ausencia de raíces secundarias
Aclimatación
El plantín sale del frasco a sustrato sólido. La humedad baja gradualmente; los estomas aprenden a regularse.
- Sustrato
- Calibrado por especie
- Humedad
- Rampa controlada
- Tiempo
- 10–14 días
Colapso por choque hídrico · quemadura por luz directa
Endurecimiento
Transición final a condiciones de invernadero. La planta gana cera cuticular y se vuelve comercialmente viable.
- Luz
- 100% ambiente
- Riego
- rutina normal
- Tiempo
- 21–45 días
Plagas (trips, ácaros) · deficiencias nutricionales
La curva que salva el lote.
Las plantas in vitro tienen estomas perezosos y casi nada de cera cuticular. Sacarlas al ambiente sin transición las mata en horas.
La rampa de la derecha es nuestra línea media para tropicales tipo Philodendron. Cambia por especie, pero la forma general no.
Aclimatación · 14 días
humedad relativaRampa de humedad recomendada. La transición agresiva colapsa estomas; la lenta invita patógenos. Esta es la línea media de nuestros lotes.
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